凝固浴温度对PVDF-g-PNIPAAm温度敏感膜成膜过程与性能的影响

通过自由基共聚的方法制备了聚偏氟乙烯-g-聚(N-异丙基丙烯酰胺)(PVDF-g-PNIPAAm)共聚物,采用浸没沉淀相转化法制备了PVDF-g-PNIPAAm共聚膜.采用超声时域反射法研究了不同凝固浴温度下PVDF-g-PNIPAAm的成膜动力学,并研究了凝固浴温度对膜结构与性能的影响.结果表明,在不同凝固浴温度下,...     

钙调素修饰金电极的交流阻抗行为研究

利用交流阻抗方法, 以氧化还原对为探针，对自组装到金电极表面的钙调素 (CaM)膜的成膜过程、不同pH值的影响以及与钙离子的结合情况进行了较系统的研究.实验结果表明, 钙调素可以自组装到金电极表面并且其自组装过程较为明显地分为快、慢两个步骤；还发现钙调素膜的性能结构随体系不同的pH值发生有规律的变化，在其等电点，膜的结构最致密；而且钙调素膜与钙离子的结合也分为较明显的三个阶段.     

聚苯乙烯细胞培养板表面的糖化温敏修饰及其对细胞行为的影响

采用紫外光固定化法, 对组织培养用聚苯乙烯板进行半乳糖糖化温敏修饰. 通过红外光谱(ATR-FTIR)和X射线光电子能谱(XPS)对改性表面的化学组成及结构进行了表征, 并采用原子力显微镜(AFM)观察了改性表面形貌, 发现改性表面比未经修饰表面粗糙度增加. 静态接触角测试结果表明, 改性表面具有良好的温度响应性. 对人肝肿瘤(HepG-2)细胞在改性表面的吸/脱附行为的研究结果表明, HepG-2细胞在半乳糖糖化温敏表面表现出比在未经修饰聚苯乙烯细胞培养板表面更好的生长趋势, 当环境温度降低时, 细胞发生自动脱附, 避免了酶解法对细胞功能造成的损伤.     

温敏性半乳糖基化壳聚糖水凝胶的制备及其对HL-7702细胞增殖行为影响的研究

以壳聚糖(CS)为原料,在1-乙基-3-(3-二甲胺丙基)碳-二亚胺盐酸盐(EDC.HCL)和N-羟基琥珀酰亚胺(NHS)的活化作用下,合成了半乳糖基化壳聚糖(GC)单体,并与N-异丙基丙烯酰胺(NIPAAm)反应,制备了温敏性半乳糖基化壳聚糖N-异丙基丙烯酰胺共聚水凝胶(Gal-CS-g-PNIPAAm).通过红外光谱(FTIR)、光电子能谱(XPS)和扫描电子显微镜(SEM)等测试方法对其成分和结构进行了表征,并对其溶胀率和表面亲疏水性进行了研究.在Gal-CS-g-PNIPAAm凝胶表面培养人正常肝细胞系(HL-7702),研究其生长、脱附及转载(再增殖)行为.结果表明Gal-CS-g-PNIPAAm水凝胶具有良好的温度响应性和生物相容性,与PNIPAAm水凝胶相比,Gal-CS-g-PNIPAAm凝胶表面更有利于HL-7702细胞增殖.将温度降低至临界温度(LCST,32.5℃)以下,细胞可以从凝胶表面自发脱附,与酶消化脱附相比,细胞损伤更少.Gal-CS-g-PNIPAAm凝胶表面脱附的细胞比PNIPAAm凝胶表面脱附的细胞活性更高,表明PNIPAAm水凝胶引入GC单体后,凝胶的生物相容性得到改善,且脱附后细胞的增殖活力明显增加.     

赖氨酸辅助高分散金粒子修饰氮掺杂TiO_2纳米管催化剂的合成及光催化性能

通过溶胶-凝胶法联合水热合成法制备了氮掺杂TiO_2纳米管,并以该纳米管为载体,采用绿色无毒的赖氨酸作为链接剂和螯合剂,一步实现金粒子在TiO_2纳米管上的高度分散,制备得到高分散金粒子修饰氮掺杂TiO_2纳米管催化剂(Au/N-TiO_2纳米管).表征了产物的形貌、结构、光学特性及组成,通过紫外光下甲基橙水溶液的光降解率评价产物的光催化活性,讨论了氮掺杂量、金负载量、赖氨酸及焙烧对合成催化剂光催化性能的影响.结果显示,在赖氨酸存在下,金粒子在TiO_2纳米管上呈高度分散状态,未发生聚集.且与纯TiO_2纳米管相比,Au/N-TiO_2纳米管显示出更高的光催化活性.Au/N-TiO_2纳米管的高催化活性是由于氮掺杂后引起的TiO_2带隙能窄化、金粒子在载体上的高分散状态及金与TiO_2形成的肖特恩势垒引起的低电子-空穴复合率共同作用导致的.     

糖化温敏凝胶的制备及其与HepG2细胞相互作用研究

利用自由基聚合法合成了半乳糖糖化温敏凝胶(P(NIPAAm-co-GAC))和壳聚糖糖化温敏凝胶(P(NIPAAm-co-CSA)),对其温度响应性和溶胀性能进行了研究,结果表明,两种糖化温敏凝胶在水中和细胞培养基中均显示较好的温度响应性,以及比聚(N-异丙基丙烯酰胺)温敏凝胶(PNIPAAm)更好的溶胀性能.进一步研究人肝肿瘤细胞(HepG2)在凝胶表面的细胞行为发现,HepG2在P(NIPAAm-co-GAC)、PNIPAAm凝胶表面吸附量及活性较高,表现出良好的生长趋势,而在P(NIPAAm-co-CSA)凝胶表面吸附量和活性很低,其增殖受到抑制;通过降低环境温度,能使培养在P(NIPAAm-co-GAC)和PNIPAAm凝胶表面的HepG2细胞发生自动脱附,避免了酶解法对细胞功能造成的损伤,并且细胞片层比单个细胞表现出更快的脱附速率;研究细胞转载行为表明,通过温度诱导得到的细胞片层,其生物活性远远大于通过酶解法得到的细胞的生物活性.