酶促-化学法合成(R)-N-苄基吗啉-3-酮-2-乙酰(4-脒基)苄胺

报道了一种酶促-化学法合成光学纯吗啉酮凝血酶抑制剂的新途径.以马来酸酐和氨基醇为起始原料,一锅法合成N-苄基吗啉-3-酮-2-乙酸甲酯;再用脂肪酶CAL-B在甲基叔丁基醚/水（体积分数=1/9）混合溶剂中将其选择性水解,制备光学纯（R）-N-苄基吗啉-3-酮-2-乙酸;经过酰胺化、还原/胺解,得到（R）-N-苄基吗啉-3-酮-2-乙酰（4-脒基）苄胺;所得化合物结构经IR,1H NMR,13C NMR表征确证.文中还讨论了酶源、溶剂、含水量、反应时间等因素对水解拆分的影响.     

脂肪酶在负离子化PET表面的单分子层自组装膜研究

研究了脂肪酶分子在表面负离子化聚对苯二甲酸乙二醇酯（PET）薄膜表面的分子自组装,由AFM和FTIR－ATR等方法研究脂肪酶单分子层膜的表面结构;活力测定表明：脂肪酶／PET自组装单分子层膜的酶活力表现率约为2.0左右。     

非水介质中曲克芦丁乙烯酯的酶促合成

在非水介质中,选择性催化曲克芦丁羟乙基上的伯羟基发生酯交换反应,合成一系列曲克芦丁乙烯酯.同时考察了酶源、酶量、反应介质、酰化试剂链长、溶剂含水量、反应时间等因素对曲克芦丁酶促酯交换反应区域选择性的影响.结果表明:以吡啶为溶剂,其含水量1%时,枯草杆菌碱性蛋白酶催化活性最高,随着酰基供体碳链的减少,产率增大,且反应达平衡的时间缩短.     

HRP/PET自组装酶膜及其在光度分析中的应用

利用静电自组装技术在阴离子化的PET表面组装了单分子层的HRP酶膜 ,通过AFM对膜表面形貌进行了分析。制备的酶自组装膜在4℃的低温条件下 ,密封保存150d后 ,酶活性仍保留80 %以上。以微量比色皿为反应容器 ,考察了酶膜与H2O2 的显色反应动力学 ,该反应的表观米氏常数 Kmapp=3.2×10-5mol·L-1(相对于H2O2 底物) ,显色反应在5min内完成 ,对样品中H2O2 测定的回收率为96.5%～101.1 %。     

单-(2-O-乙烯癸二酰)-β-环糊精的酶促合成和结构分析

研究枯草杆菌蛋白酶催化环糊精与癸二酸二乙烯酯在DMF有机溶剂中的区域选择性反应,产物结构经IR、1H NMR、13C NMR、MS和DSC分析证实为单-(2-O-乙烯癸二酰)-β-环糊精;同时考察了三种不同的酶对反应的催化作用.结果表明枯草杆菌蛋白酶和Candida cylindracea脂肪酶对β-环糊精在C-2位仲羟基的酯交换反应显示很高的选择性,而lipozyme固定化酶在此体系中没有催化活性.     

α-淀粉酶在阴离子化PET表面的自组装膜及其AFM研究

采用分子沉积技术制备了α-淀粉酶的自组装膜，并用AFM研究了在不同的pH值溶液和不同电荷密度基底上得到的自组装膜。结果表明：pH值从6.0变到4.0，形状变得尖细，膜中陷点多；基底的电荷密度增大时，酶分子的外观形状较细，膜中缺陷点少；α-淀粉酶自组装膜的厚度保持约5～10nm。     

酶促药物衍生化的研究进展

介绍了近年来药物酶促衍生化研究的新进展, 包括酶促衍生化各种脂溶性药物. 水溶性药物和一些研究比较活跃的药物, 从而提高药物生物利用度, 同时针对药物不同基团的选择性衍生化进行阐述.     

生物大分子自组装膜及其应用研究进展

本文主要介绍了酶，蛋白质、DNA等生物大分子自组装膜的研究进展，并对生物大分子膜在生物传感器，分子器件，高效催化材料，医用生物材料等方面的应用前景进行了展望。     

HRP/PET自组装膜及其在光度分析中的应用

利用静电自组装技术在阴离子化的PET表面组装了单分子层的HRP酶膜,通过AFM对膜表面形貌进行了分析.由于HRP的沉积,PET薄膜在组装HRP前后,表面形貌发生了较大的变化,表面粗糙度(Rms)由0.645 nh增加到2.580 nm,表面酶颗粒高度为3.3 nm,与HRP的XRD数据(4.028 nm×6.746 nm×11.711)基本相符.制备的酶自组装膜在4℃的低温条件下密封保存.该酶膜在最初的一个星期内酶活性下降较快,之后酶活性则基本保持不变,150天后仍能保持最初时的80%以上的活性;而在常温下,酶膜很快失去活性.表明自组装HRP/PET酶膜在低温下具有很好的保存稳定性.以微量比色皿为反应容器,考察了酶膜与H2O2的显色反应动力学,该反应的表观米氏常数Kapp m=3.2×10-5 mol/L(相对于H2O2底物),显色反应在5 min内完成.在所考查的H2O2浓度浓度区间内(8.8×10-6～8.8×10-5mol/L),酶膜所催化的显色反应产物的吸光度与其浓度之间存在良好的线性关系,对样品中H2O2测定的回收率为96.5%～101.1%.