反相高效液相色谱法测定小鼠血浆及组织中的阿昔洛韦浓度

 建立了测定小鼠血浆、肝、肾、脾、肺等组织中阿昔洛韦 (ACV)浓度的高效液相色谱法。色谱柱为HypersilODS ,流动相为甲醇 水 冰醋酸 (体积比为 1∶99∶0 5 )混合溶液 ,流速为 1 5mL/min ,检测波长为 2 5 2nm。ACV血浆最低检测浓度为 2 0 μg/L ,各组织最低检测浓度为 5 0ng/g。血浆及组织匀浆中的ACV浓度在 0 1mg/L～ 4mg/L及 0 1μg/g～ 4μg/ g时线性关系良好 (r >0 99)。血浆及肝匀浆中的ACV回收率分别为 97 5 %～ 10 0 0 %和 10 0 0 %～ 10 6 0 % (n =5 )。该法精密度高 ,方便 ,快捷 。     

直接竞争酶联免疫吸附-高效液相色谱法测定烯效唑

应用本实验室制备的对烯效唑具特异性亲和力的多克降抗体,采用包被抗体直接竞争模式建立烯效唑的酶联免疫吸附分析法。在优化条件下,对烯效唑标样检测的线性范围为1～10^-4mg/L,线性中浓度为1.31μg/L,5次重复测定的相对标准偏差（RSD）为8.4%;检出限为0.022μg/L。在苹果中分别添加烯效唑标样1 0,0.1和0 01 mg/kg;直接竞争E LISA法测定的回收率分别为84.6%～101.0%,99.6%～117 0%和80.8%～92.8%;RSD（n=5）分别为8.6%,6.9%和6.7%。ELISA法对苹果中烯效唑的检出限为0.024μg/kg。在同样前处理条件下,高效液相色谱-紫外检测（HPLC-UVD）法对苹果中烯效唑的检出限为0.25 mg/kg,苹果中添加1 00 mg/kg烯效唑,HPLC UVD法测定的回收率为92.6%。     

生物素-亲和素放大酶联免疫吸附法测定氯胺酮

建立了检测氯胺酮的生物素-亲和素放大酶联免疫吸附测定法(BA-ELISA)。实验最佳测定条件:抗原包被浓度为2.0mg/L、氯胺酮单克隆抗体浓度为10.2mg/L,生物素化羊抗小鼠IgG(Biotin-IgG)和酶标链霉亲和素(SA-HRP)的最佳反应浓度分别为0.29和1.0mg/L。在此优化条件下,方法的线性范围为0.1～1000μg/L;检出限为0.03μg/L。氯胺酮生物样品的加标回收率为94%～102%。与酶标二抗体系ELISA法相比,BA-ELISA具有更高的灵敏度,适于低浓度氯胺酮的检测。     

双抗体夹心酶联免疫检测法测定蓖麻毒素

建立了双抗体夹心酶联免疫法检测蓖麻毒素的方法。优化了最佳蓖麻毒素多克隆抗体包被浓度和包被方法、蓖麻毒素单克隆抗体工作浓度、酶标记二抗体工作浓度和显色时间等实验条件。方法的线性范围在1.2~10.0μg/L之间,线性回归方程y=0.05x 0.42,相关系数为0.9962,检出限为0.2μg/L。将该方法用于检测实际水样蓖麻毒素加标样品,回收率为91.7%~104.0%;检测实际土壤加标样品,回收率为83.3%~98.0%;检测奶粉加标样品,回收率为83.3%~94.0%;检测实际血液加标样品,回收率为75.0%~82.0%。     

HPLC法直接同时测定大鼠毛发中的胱氨酸、酪氨酸及组氨酸

建立了同时测定大鼠毛发中胱氨酸、酪氨酸和组氨酸的高效液相色谱(HPLC)检测方法。优化了色谱分离及检测条件,样品经酸解后进样分析。采用Titank C18色谱柱(4. 6 mm×250 mm,5μm),以10 mmol/L磷酸氢二铵缓冲液(含10 mmol/L 1-辛烷磺酸钠,用磷酸调至p H 2. 0)-乙腈为流动相,进行梯度洗脱,流速1. 0 m L/min,检测波长205 nm,进样体积为100μL,柱温为8℃。结果表明,在优化条件下,大鼠毛发中的胱氨酸、酪氨酸和组氨酸能实现有效分离。3种氨基酸的线性良好,相关系数(r)均大于0. 999;检出限(S/N=3)为49～442μg/L;定量下限(S/N=10)为148～884μg/L;样品的平均加标回收率为97. 8%～102%,相对标准偏差(RSD)为0. 1%～1. 6%。该方法操作简便、准确可靠、重现性好,可用于大鼠毛发中胱氨酸、酪氨酸和组氨酸的检测。     

虾肉中呋喃它酮代谢物化学发光酶免疫分析方法的建立

采用对碘苯酚增强的HRP-鲁米诺-H2O2化学发光体系,建立了虾肉中呋喃它酮代谢物5-吗啉甲基-3-氨基-2-恶唑烷基酮(AMOZ)残留的间接竞争化学发光酶免疫分析(icCLEIA)检测方法。检测所用抗体是基因重组的抗AMOZ衍生物单链抗体。优化的icCLEIA最佳工作条件为:AMOZA-OVA包被浓度62.5μg/L,抗AMOZ衍生物单链抗体最佳稀释度为1∶10,竞争免疫反应时间45 min,HRP酶标记羊抗鼠抗体最佳稀释度为1∶10000,孵育时间50 min。本方法的IC50为1.38μg/L;灵敏度为0.09μg/L;线性范围为0.26～9.08μg/L(IC20～IC80);批内和批间相对标准偏差均小于15%;抗AMOZ衍生物单链抗体与其它硝基呋喃类抗生素及其代谢物均没有交叉反应,特异性良好。4个不同添加量的AMOZ加标样品的平均回收率分别为72.2%,73.4%,72.6%和78.6%。与HPLC-MS/MS法测定值进行比较发现,两种方法相关性良好(R2=0.9997)。本方法可用于水产品中AMOZ残留的快速检测。     

3种酶联免疫分析法在蓖麻毒素定量测定中的比较

建立了蓖麻毒素的3种酶联免疫定量分析法,即光吸收、荧光和化学发光免疫分析法,并系统优化了各项实验条件。结果显示:对于化学发光检测法,当酶标抗体HRP-4C13稀释倍数为1∶8000时可获得最佳的信噪比,且酶与底物反应3 min后信号趋于稳定。随后在各自优化的条件下将3种方法用于毒素的检测。比较结果表明:化学发光酶联免疫分析法除具有线性范围宽(0.02～5.5μg/L,r2=0.999)、灵敏度高(检出限为5 ng/L)的特点外,还具有简单、快速、体系稳定性好等优点。将本方法用于不同实际样品基质,如饮用水、碳酸饮料、奶粉、咖啡和血清中添加的蓖麻毒素的检测,其检出限为0.005～0.08μg/L,回收率为89.6%～108.8%,适于污染及中毒样品中痕量蓖麻毒素的定量分析。     

高效液相法测定面粉中的过氧化苯甲酰

 报道了测定面粉中过氧化苯甲酰含量的一种改进方法。面粉直接以石油醚萃取 ,采用Shim PackVP ODS柱 (0 46cmi d × 1 5cm ,5μm～ 6μm) ,以乙腈 体积分数为 0 3 %的磷酸水溶液 (体积比为 4∶1 )为流动相 ,流速1 0mL/min ,检测波长 2 36nm。在此条件下 ,过氧化苯甲酰和苯甲酸的质量浓度分别和其峰面积呈良好的线性关系 ,过氧化苯甲酰的线性范围为 0 0 0 2 g/L～ 0 0 1 2 g/L(r =0 9995) ,最小检测量为 0 0 0 5g/kg;苯甲酸的线性范围为 0 0 0 2g/L～ 0 0 1 2g/L (r =0 9993) ,最小检测量为 0 0 1g/kg。     

双酶显色-紫外-可见分光光度法测定牛奶中组胺与腐胺的含量

建立了基于二胺氧化酶-辣根过氧化物酶双酶显色的紫外-可见分光光度法测定牛奶中组胺与腐胺含量的方法。取10 mL牛奶样品,加入10 mL 2%（质量分数）硝酸铅标准溶液,混匀,再加入20 mL 0.1%（质量分数）三氯乙酸标准溶液,混匀,离心,取上清液,将溶液pH调至7.2,得到待测样品溶液。移取1.0 g·L^-1二胺氧化酶标准溶液100μL,加入100μL待测样品溶液,于50℃水浴中反应15 min。反应结束后,依次加入1.0 g·L^-1辣根过氧化物酶标准溶液50μL,0.5 g·L^-1四甲基联苯胺标准溶液200μL和2 mol·L^-1盐酸溶液50μL,采用紫外-可见分光光度计测定体系的吸光度。结果显示：样品溶液由无色变为蓝色又变为黄色;组胺、腐胺的浓度分别在2.5～150μmol·L^-1和5～200μmol·L^-1内与其对应的吸光度呈线性关系,检出限（3S/N）分别为0.652 2μmol·L^-1和1.134 1μmol·L     

酶联免疫吸附分析检测鳍藻毒素DTX1和DTX2

利用BALB/c小鼠腹水大量制备抗大田软海绵酸(Okadaic Acid,OA)的单克隆抗体,并以此抗体为探针建立了检测鳍藻毒素(Dinophysistoxins,DTXs)DTX1和DTX2的间接竞争酶联免疫吸附分析方法(Enzyme Linked Immunosorbent Assay,ELISA)。DTX1和DTX2各组分的标准曲线在一定范围内都有良好的线性范围和相关系数,最低检出浓度为0.53μg/L和0.45μg/L;批内和批间平均变异系数为6.18%、5.11%和7.28%、5.79%;加标样品平均回收率为76.4%、79.9%;OA与DTX1和DTX2的交叉反应率分别为53%和79%。结果表明,该方法可用于贝类样品中DTX1和DTX2的残留检测。     

高效液相色谱法测定皮炎宁酊中间苯二酚和水杨酸的含量

采用高效液相色谱法测定了皮炎宁酊中间苯二酚和水杨酸的含量。色谱柱为ＨｙｐｅｒｓｉｌＯＤＳ柱,流动相为Ｖ（甲醇）∶Ｖ（水）∶Ｖ（乙酸）＝５０∶５０∶０．９。检测波长为２８５ｎｍ。在此条件下,间苯二酚和水杨酸可与其降解产物及杂质完全分开。     

Liquid chromatographic assay for constituent disaccharides of hyaluronic acid and chondroitin sulphate isomers

An improved high-performance liquid chromatographic (HPLC) method for unsaturated disaccharides prepared from hyaluronic acid and various chondroitin sulphate and dermatan sulphate isomers was developed, which involves an ion-exchange resin prepared from a sulphonated styrene-divinylbenzene copolymer. The retention times of the individual unsaturated disaccharides were unique and reproducible, the disaccharides appearing in the following order: unsaturated non-sulphated disaccharide derived from hyaluronic acid, then unsaturated 6-sulphated, non-sulphated and 4-sulphated disaccharides from chondroitin sulphate isomers. Unsaturated disulphated disaccharide G had a much shorter retention time than the unsaturated non-sulphated disaccharide derived from hyaluronic acid. The contents of these individual unsaturated disaccharides could be determined with similar sensitivities on the basis of their ultraviolet absorbance. Selective and unique retention times and good resolutions were found for various unsaturated disulphated and trisulphated disaccharides. The proposed method can be used to determine various chondroitin sulphate and dermatan sulphate isomers in addition to hyaluronic acid in amounts as small as 100 ng to 8 micrograms. The practicality of this method was verified by its application to the separation and determination of the different types of chondroitin sulphate and dermatan sulphate isomers derived from human arteries in the presence of appreciable amounts of hyaluronic acid.     

Quantitation of hyaluronic acid and chondroitin sulphates in rabbit synovial fluid by high-performance liquid chromatography of oligosaccharides enzymatically derived thereof

A high-performance liquid chromatographic (HPLC) method for quantifying unsaturated hexasaccharide and tetrasaccharide from Streptomyces hyaluronidase enzyme digestion products of hyaluronic acid was developed using a gel-permeation column packed with a sulphated polystyrene-divinylbenzene gel. For the oligosaccharides, the separation was accomplished in less than 7 min with a detection limit of 65 ng. An unsaturated non-sulphated disaccharide prepared from hyaluronic acid (delta Di-HA) and an unsaturated sulphated disaccharide (delta Di-4S) were analyzed by a HPLC method using a combination of two different gel-permeation columns. The separation of the disaccharides required less than 17 min at a flow rate of 0.7 ml/min with detection limits of as little as 4 ng for delta Di-HA and 5 ng for delta Di-4S. Both chromatographic methods were used for assay of a major component of hyaluronic acid and trace amounts of chondroitin sulphates in rabbit synovial fluid. The resulting contents of hyaluronic acid were compared to the values of polymeric hyaluronic acid directly measured by a HPLC method using two gel-permeation columns packed with a poly(hydroxyalkyl methacrylate) gel and the amounts of hyaluronic acid converted from uronic acid content determined by a colorimetric method.     

Microdetermination of hyaluronic acid in human urine by high performance liquid chromatography.

A high performance liquid chromatographic (HPLC) system is described for determination of the unsaturated disaccharide (delta Di-HA) derived from hyaluronic acid (HA) in human urine by digestion with hyaluronidase SD. The effects of eluents on the separation of delta Di-HA and delta Di-0S, which is derived from the reaction of chondroitin with the enzyme, have been studied. The established chromatographic conditions were as follows--column: a stainless steel tube (4 mm i.d. x 250 mm) packed with TSKgel NH2-60; eluent: a mixture of acetonitrile and 0.1 M Tris-HCl buffer containing 0.1 M boric acid and 10 mM sodium sulphate, pH 7.0 (64:36, v/v). The strong fluorescence of unsaturated disaccharide after the reaction with 2-cyanoacetamide in alkaline medium was used for post-column detection. The calibration curve for delta Di-HA was linear in the range 5 pmol-5nmol with a practical detection limit of 2 pmol. The assay coefficients of variation (n = 5) at 200 pmol for delta Di-HA and delta Di-0S were 1.7 and 1.5%, respectively. This HPLC system has been applied to the determination of HA in human urine.     

高效液相色谱法测定贝类中的软骨藻酸

 介绍了用反相高效液相色谱 (RP HPLC)测定贝类中软骨藻酸的方法。样品以V(甲醇 )∶V(水 ) =1∶1的溶液提取 ,经LC SAX强阴离子柱固相萃取净化 ,用RP HPLC定量分析。方法的最小检出限为 0 2 μg/ g ,在 1 0mg/L～ 2 5 0mg/L范围内有良好的线性关系 ,测定结果准确 ,重现性好 ,回收率大于 96 %。     

反相高效液相色谱法测定罐头食品中乙二胺四乙酸的残留量

 将罐头食品捣碎后用水稀释,加氯化铜溶液和抗坏血酸,用水定容,过0.45 μm滤膜后立即供液相色谱分析,在254 nm波长处测定。色谱柱：Hypersil ODS(125 mm×4 mm i.d., 5 μm);流动相：水-甲醇（体积比为80∶20）,含有20 mmol/L四丁基溴化铵,0.03 mol/L 醋酸钠缓冲液（pH 4） ,流速：0.8 mL/min;进样量：20 μL。EDTA在10 mg/L～400 mg/L范围内呈线性。方法回收率为95.5%～98.9%,其RSD为0.82%～1.32%。     

柱前衍生-反相高效液相色谱法测定2-去氧葡萄糖的含量

采用对氨基苯甲酸乙酯为衍生化试剂,建立柱前衍生化反相高效液相色谱法(RP-HPLC)测定2-去氧葡萄糖的含量.结果表明,最适的衍生化条件为反应温度85℃,反应时间1.5 h,衍生化试剂(ABEE)和单糖(2-DG/Glu)的摩尔比为25∶1;色谱条件为色谱柱Hypersil ODS2 (250 mm×4.6 mm,5μm),流动相为0.02％TFA-乙腈(80∶20,V/V),流速1.0 mL/min,波长307 nm.本方法在1～700 mg/L浓度范围内与峰面积呈良好的线性关系(r-0.9999);定量限(S/N-10)及检出限(S/N-3)分别为450和100 μg/L;平均加标回收率为101.7％;RSD为0.7％;日内及日间精密度均小于0.7％.表明本方法灵敏度高,测定结果准确,重复性好,可用于2-去氧葡萄糖样品的准确定量分析.     

高效液相色谱法测定血清中头孢噻肟浓度

用固相萃取法处理样品,以扑热息痛为内标物、甲醇－醋酸钠／醋酸缓冲溶液作流动相,采用反相高效液相色谱法测定血清中头孢噻肟的浓度。头孢噻肟和内标物的平均回收率分别为９６．７％和９７．７％,头孢噻肟血清浓度在１０ｍｇ／Ｌ至１５０ｍｇ／Ｌ范围内有良好线性关系,最低检测浓度为２ｍｇ／Ｌ,日内和日间相对标准偏差分别在３．０％和４．１％以内。结果表明方法准确、简便。     

高效液相色谱-串联质谱法快速测定水基食品模拟物中28种受限芳香族伯胺的迁移量

建立了高效液相色谱-串联质谱(HPLC-MS/MS)联用方法用于快速测定水基食品模拟物(10%乙醇、30 g/L乙酸和20%乙醇)中28种芳香族伯胺的迁移量。用水基食品模拟物浸泡待测样品中一定时间(在100 ℃条件下)后,冷却至室温并混匀,所得浸泡液经亲水性聚四氟乙烯针头式过滤器过滤后,直接进行HPLC-MS/MS测定。采用Agilent Zorbax SB-Phenyl柱,以水和0.1%甲酸-25%乙腈-甲醇溶液为流动相进行梯度洗脱分离;质谱具电喷雾离子源,在正离子和分段式多反应监测(MRM)模式下检测。结果表明,方法定量限为0.002～10 μg/L,在5～100 μg/L或10～100 μg/L范围内线性关系良好(r2＞0.995);在10、20、40 μg/L水平的加标回收率为76.6%～114%,相对标准偏差为1.53%～8.97%。该方法样品前处理简单快速,色谱分离效果和线性关系好,检出限较低、回收率和准确度高,且完全满足欧盟(EU)No 10/2011法规中对芳香族伯胺特定迁移量的限量要求。该方法已成功应用于30批次出口欧盟的食品接触材料相关制品中芳香族伯胺特定迁移量的检测。     

α-萘乙酸的高效液相色谱分析

采用高效液相色谱法 ,hypersil 5μmC1 8柱 ( 4 .6× 2 50mm) ,以pH =3～ 4的V(甲醇 )∶V(水 )∶V(磷酸 )=60∶40∶0 .35为流动相 ,检测波长 2 72nm ,测定α -萘乙酸的含量。在 0 .0 1 6～ 1 .0 0 0 g/L范围内 ,浓度与峰面积线性关系良好 (r =0 .9997) ,精密度RSD为 0 .8% (n =5) ,方法简便 ,准确。