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Fe3O4磁性纳米粒子(Fe3O4MNPs)具有模拟过氧化氢酶的催化特性。基于Fe3O4MNPs催化H2O2氧化吡罗红建立了催化动力学荧光法测定H2O2的方法。对Fe3O4MNPs-吡罗红-H2O2体系的荧光光谱进行了研究,并考查了一些因素对体系的影响。所研究的催化反应分别在7~13min和13~18min内为假零级反应,对应的表观速率常数分别为1.33×10-1s-1和8.41×10-2s-1。反应时间为18 min时,催化反应的表观活化能为40.42 k J·mol-1。在最佳实验条件下,方法的线性范围为3.20×10-4~1.12×10-2mol·L-1,检出限为1.65×10-4mol·L-1。该法可用于消毒液、雨水、自来水及合成样品中H2O2含量的测定。 相似文献
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用荧光光谱法和紫外-可见吸收光谱法研究了在模拟人体生理条件下吡唑[3,4-b]并吡啶类药物和人血清白蛋白(HSA)结合反应的特征,并利用同步荧光法和三维荧光法研究了吡唑[3,4-b]并吡啶类药物与HSA作用前后人血清白蛋白的构象变化。研究表明,吡唑[3,4-b]并吡啶类药物对HSA有较强的荧光猝灭作用,该过程为静态猝灭过程。基于荧光猝灭机理,得出不同温度下的结合位点数和结合常数。根据Frster非辐射转移理论可求出吡唑[3,4-b]并吡啶类药物与HSA作用距离;根据基本热力学参数ΔH、ΔS和ΔG判断吡唑[3,4-b]并吡啶类药物和HSA主要通过氢键和范德华力发生相互作用。分子模拟研究结果表明,吡唑[3,4-b]并吡啶类药物与HSA的作用区域位于siteⅠ位(亚结构域ⅡA)。 相似文献
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在pH 6.5的弱酸性条件下,盐酸丙咪嗪(IPH)能将Fe3+还原为Fe2+,根据Fe2+与K3[Fe(CN)6]反应生成可溶性的普鲁士蓝(Fe3[Fe(CN)6]2),使体系的共振瑞利散射强度显著增强,可以间接测定盐酸丙咪嗪的含量。据此建立了共振瑞利散射法测定盐酸丙咪嗪含量的新方法。盐酸丙咪嗪在0.04~3.50 mg/L范围内与共振瑞利散射强度增加值呈良好的线性关系,检出限为0.034 mg/L。考察了体系的共振瑞利散射光谱、紫外-可见吸收光谱特征,研究了适宜的反应条件以及共存物质的影响。该方法用于盐酸丙咪嗪片剂和尿样中盐酸丙咪嗪含量的测定,回收率在97.8%~103.3%之间。 相似文献
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基于氧化石墨烯,以修饰了荧光分子的单链DNA为探针,利用荧光光谱和圆二色光谱研究了Ag+对双螺旋DNA中C-C碱基错配特异性识别,并建立了检测Ag+的荧光方法。荧光光谱表明Ag+能与带C-C错配碱基的双螺旋DNA作用,使原本被氧化石墨烯淬灭的标记在DNA上的荧光分子的荧光得到恢复。圆二色光谱表明Ag+能与双螺旋DNA中的C-C碱基错配相互作用,形成更稳定的C-Ag+-C结构。在最佳实验条件下,体系荧光强度的变化与Ag+的浓度在30.0~250.0 nmol/L之间呈良好的线性关系,方法检出限为19.1 nmol/L。为研究Ag+与核酸分子的相互作用及其在环境中对生物分子的影响等方面提供了重要依据。 相似文献
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氨苄西林与铜(Ⅱ)形成配合物,减弱了铜(Ⅱ)对核固红的荧光猝灭作用,导致体系荧光增强,据此提出了一种测定氨苄西林含量的荧光光谱法。考察了缓冲溶液、试剂加入顺序、核固红和铜(Ⅱ)的浓度、反应温度和时间、离子强度等对体系的影响。在最佳试验条件下,氨苄西林的质量浓度在0.50~26mg·L-1范围内与增强的荧光强度呈线性关系,检出限(3s/k)为0.40 mg·L-1。将方法用于氨苄西林胶囊中氨苄西林含量的测定,回收率在98.1%~101%之间,测定值的相对标准偏差(n=6)在1.7%~2.1%之间。 相似文献
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在pH 1.8~3.0的酸性介质中,质子化的盐酸异丙嗪(PMZ)可与带负电荷的金纳米微粒依靠静电和疏水作用相互结合,导致共振瑞利散射(RRS)强度显著增强,其最大散射峰位于368 nm,并在284,440,498 nm处有明显的散射峰,在选定的测量波长下,盐酸异丙嗪在0.04~0.10μg/mL的浓度范围内与RRS强度成正比,该法具有高的灵敏度,其检出限为1.34 ng/mL。考察了体系的RRS光谱特征,研究了适宜的反应条件、影响因素,研究了共存物质的影响,据此建立了金纳米微粒作探针RRS法测定盐酸异丙嗪的新方法。 相似文献
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十六烷基溴化吡啶与脱氧核糖核酸作用的共振光散射光谱及其分析应用 总被引:8,自引:0,他引:8
在碱性条件下,十六烷基溴化吡啶(CPB)与脱氧核糖核酸(DNA)共存时,体系产生较强的共振光散射,其强度与DNA浓度呈线性关系,据此提出了基于阳离子表面活性剂的共振光散射法定量测定DNA。在最佳实验条件下,测得小牛胸腺DNA(ctDNA)和鱼精子DNA(fsDNA)的线性范围分别为0.2-2.0mg/L和0.2—1.25mg/L,检出限分别为0.07mg/L和0.05mg/L。该方法已应用于合成样品及实际样品中DNA含量的测定。 相似文献