DRM1,DRM2参与拟南芥愈伤组织的形成

通过体视显微镜、半薄切片、扫描电子显微镜观察拟南芥DNA从头甲基化酶DRM1,DRM2的双突变体drm1/drm2在愈伤诱导培养基上所诱导的愈伤组织,结果发现:与野生型相比,其种子和根、叶、叶柄等外植体,均具有在同等条件下愈伤组织增多,分裂旺盛的表型。编码拟南芥DNA从头甲基化酶DRM1,DRM2的基因DRM1,DRM2的表达水平也与生长素、细胞分裂素等外源激素浓度相关,由此推测外源激素浓度影响DRM1,DRM2的表达。暗示了DRM1,DRM2可能参与了拟南芥愈伤组织形成过程。     

利用膜片钳-激光扫描共聚焦显微镜同步实时系统观察心肌细胞浆内钙离子的释放

目的:采用膜片钳和激光扫描共聚焦显微镜同步实时系统观察心肌细胞钙离子的释放.方法:在体外培养的单个心室肌细胞上进行全细胞模式膜片钳技术和共聚焦显微镜钙成像技术相结合,同步实时记录钙火花和钙离子浓度变化.结果:在全细胞模式膜片钳记录心肌细胞膜钙电流的同时,激光扫描共聚焦显微镜可准确记录到胞浆内出现的钙火花.此技术有可能对于明确钙火花的特征.准确理解兴奋一收缩偶联的微观机制有重要意义.     

应用高压冷冻-冷冻置换技术研究受Potyvirus侵染的寄主细胞超微结构

应用高压冷冻-冷冻置换技术（HPF-FS）制备了马铃薯Y病毒属的小西葫芦黄花叶病毒（ZYMV）和大豆花叶病毒（SMV）侵染寄主植物叶细胞的超薄切片样品,并与传统化学固定方法进行比较。透射电镜观察结果显示：病毒粒子和内含体的形态分布在两种方法处理的样品中无明显差异,但高压冷冻样品的细胞超微结构精细,细胞壁与细胞质之间边界清晰,质膜平滑而完整,细胞基质丰富;细胞核和叶绿体、线粒体等形态饱满,高尔基体潴泡结构及分泌小泡清晰,在ZYMV感染细胞的叶绿体中观察到囊泡结构。而化学处理的样品普遍存在细胞结构的收缩和变形,特别是质膜褶皱,与细胞壁分离,叶绿体呈梭形,片层结构发生改变,高尔基体潴泡结构及分泌小泡相当少见。实验结果有利于正确区别病毒所引起的细胞病理变化和化学处理而产生的人工假象。     

高压冷冻技术在拟南芥细胞微结构研究中的应用

高压冷冻技术是指以高压冷冻固定为主要内容的一种电镜技术。该技术可以充分、快速固定样品的同时,避免引入操作干扰,使得电镜结构更接近样品生活状态。本文利用拟南芥为材料,比较了高压冷冻固定及冷冻替代制备的电镜样品同常规化学固定、室温梯度脱水方法所制备样品的差异。结果显示,在拟南芥根及叶片中,高压冷冻技术可以有效地避免常规制备样品中的细胞壁收缩,细胞质不均匀分布,高尔基体及质体收缩,细胞膜及液泡膜皱缩甚至断裂等现象,使细胞结构更接近其生活时的状态。     

纳米氢氧化镁的合成及其形貌控制

用乙醇和水的混合溶剂热法合成氢氧化镁纳米材料,并用透射电镜(TEM)和X射线衍射(XRD)表征其形貌和结构,同时考察了镁源、温度、反应时间、反应物浓度和溶剂热体系对氢氧化镁纳米材料形貌的影响,探索其生长机理。镁源通过改变氢氧化镁纳米粒子的结晶习性从而影响形貌,温度和反应时间受热力学和动力学的控制使氢氧化镁纳米材料的生长从六个等价面的取向生长向各向同性生长转变,从而导致形貌由六边形片状结构向圆形变化,反应物浓度和溶剂热体系影响成核快慢,从而影响氢氧化镁纳米材料的晶型。     

西藏樟木口岸古滑坡变形监测分析

樟木口岸古滑坡位于喜马拉雅山脉南麓,地形陡峻,构造运动强烈,地震活动频繁,雨量丰沛,基底为前震旦系达莱玛桥组黑云斜长片麻岩、片岩,上覆第四系残坡积、崩坡积物。本文采取地表裂缝监测、地表位移监测和深部位移监测3种方法,对古滑坡的变形特征与规律进行了较系统研究分析。监测结果表明两个古滑坡未发生变形,处于稳定状态,福利院古滑坡体中部发生复活,即消防队次级滑坡,目前该滑坡处于蠕动挤压阶段,变形呈缓慢增长趋势,降雨和人为开挖坡体是滑坡复活的诱发因素。     

LBD29基因在拟南芥侧根发生过程中的作用

以拟南芥LBD29基因功能缺失突变体lbd29为材料,采用显微及亚显微技术,研究了拟南芥LBD29基因对于中柱鞘细胞分化和侧根发生的影响。结果显示：（1）与野生型相比,lbd29侧根发生晚,侧根数量少;（2）拟南芥根成熟区中柱鞘细胞是由两类分化程度不同的细胞组成,侧根原基形成前,位于木质部极中柱鞘的侧根原基建成细胞（founder cells）首先经历了脱分化,进而分裂形成侧根原基;（3）突变体中柱鞘细胞生长素响应不敏感,具有一定程度的脱分化障碍。以上结果初步表明,LBD29基因可能通过生长素响应通路调控中柱鞘founder cells的脱分化及分裂,从而影响侧根发生。     

高压冷冻技术及其在植物细胞超微结构中的应用

冷冻固定技术可以将生物组织和细胞内所有结构和成分同时固定。因此避免了因化学渗透固定而引起的各种假象。通常,在常压下冷冻技术仅能使生物样品表面１０～３０μｍ厚度得以充分固定,而高压冷冻技术则能使样品有效固定厚度增加至６００μｍ。尽管植物组织细胞具有特殊的结构－厚壁和含大量水分的液泡,使冷冻固定较为困难,但利用高冷冻技术仍能使２００μｍ厚度的样品得到充分固定,而且能够捕获近似自然状态的细胞超微结构。本