罗非鱼除藻对月湖水质的影响

宁波月湖放养罗非鱼前后的水体理化因子检测结果表明, 放养罗非鱼后水体透明度有较大改善,年平均升高0. 16m,与同期进行的浮游生物调查结果十分吻合.与此相反,水体COD、TP和TN比前一年均有不同程度的增加,其中TN差异显著(P<0.05),TP为极显著(P<0.01);通过与进水口的水质对比,发现TN、TP受外源水质影响明显.多元回归方法分析证明月湖TP的增加与罗非鱼放养之间存在一定的线性关系,而罗非鱼对浮游藻类的牧食压力导致了水体叶绿素的减少及透明度的提高.     

罗非鱼放养量对盐酸水微型生态系统浮游生物群落...

报道了放养不同密度的尼罗罗非鱼（ｏｒｅｃｏｈｒｏｍｉｓ ｎｉｌｏｔｉｃｕｓ）对微型生态系统浮游生物影响的研究结果。我罗非鱼的放养量为５个水平（０～８．１２ｋｇ．ｍ＾－３）。结果表明,随着罗非鱼放养量的增大,蓝藻、轮虫、枝角类、桡足类的量、ｐＨ、和ＴＮ：ＴＰ比值下降;相反,绿藻、硅藻、原生动物、浮游植物叶绿素ａ含量、浊度、总碱度、电导率、ＴＮ和ＴＰ均增加;而在生物量上小型硅和绿藻占优势使浮游植物小型     

Hg~(2 )、Cd~(2 )对鱼类嗅觉的毒性及Ca~(2 )的解毒作用

以罗非鱼为实验对象 ,采用电生理学和组织学方法系统研究了 4种不同浓度的 Hg2 、Cd2 污染液对鱼类嗅觉功能和嗅觉器官结构的损伤 ,以及 Ca2 对 Hg2 或 Cd2 的解毒作用 ,结果表明 :1)Hg2 、Cd2 均可抑制罗非鱼嗅电图 ( electro- olfactogram,简称 EOG)反应 ,抑制效应随离子浓度的升高和污染时间的延长而增大 .Hg2 的 IC50 值为 67.73μg/ L,Cd2 为 33.91μg/ L,Cd2 的抑制效应大于 Hg2 .2 ) Ca2 Hg2 、Ca2 Cd2 混合液 (含 80 mg/ L Ca2 )对 EOG的抑制作用均小于同浓度单一金属离子的抑制作用 ,表明 Ca2 对 Hg2 或 Cd2 均有一定的解毒效应 ,其中 Ca2 对 Hg2 的解毒效应大于 Cd2 .3)光镜研究显示 ,分别浸浴在 10、50 μg/ L Hg2 或 Cd2 4种污染液 15d后的罗非鱼嗅上皮均有不同程度的损伤 .在低浓度组 ,损伤主要是非感觉区粘液细胞出现增生现象 ;高浓度组的嗅上皮局部出现空泡化 ,嗅上皮边缘出现缺口并有细胞溢出 .在含 80 mg/ L Ca2 的 10 μg/ L Hg2 或Cd2 混合组中 ,嗅上皮基本无损伤 ;在含同样浓度 Ca2 的 50μg/ L Hg2 或 Cd2 混合组中 ,未见嗅上皮空泡化 ,仅观察到嗅上皮细胞出现皱缩     

罗非鱼育种研究进展

罗非鱼是世界性的养殖鱼类,同时也是我国水产业重要养殖品种.我国罗非鱼产业发展迅速,罗非鱼养殖产量、产值和出口额均居世界第一位.但由于引种时间较长,我国罗非鱼繁殖也较普遍的存在种质退化的问题.针对罗非鱼育种研究,从选择育种、杂交育种、细胞工程育种及分子辅助育种几个方面对其育种的基本原理和应用技术进行了系统的阐述,希望较全面的反应国内外罗非鱼育种研究的进展和动态,并对今后科研工作者开展罗非鱼良种繁育工作提供参考.     

酶解时间对罗非鱼鱼皮胶原蛋白酶解物抗氧化活性的影响

为了探究酶解时间对罗非鱼鱼皮胶原蛋白酶解物抗氧化活性的影响,采用酸法提取罗非鱼鱼皮胶原蛋白,胃蛋白酶酶解3、6、9、12和24 h制备酶解物,进行紫外光谱扫描,水解度测定,以DPPH·、·OH和O2?·清除率为指标评价抗氧化活性.结果表明:最大紫外吸收峰相似,水解度与酶解时间呈正相关;9 h酶解物对三种自由基清除效果最...     

新吉富罗非鱼选育过程中遗传变异的AFLP分析

为了查明罗非鱼选育过程中发生的遗传变异,采用扩增片段长度多态(AFLP)方法,对吉富品系尼罗罗非鱼选育系基础群体F0、选育群体F6-9进行遗传差异分析.8对EcoR Ⅰ/Mse Ⅰ引物组合共产生308条清晰的DNA带.多态位点比例在群体间呈现出差异性,F0代为51.3%,F6代为48.7%,F7代为47.1%,F8代为46.1%,F9代为43.8%.平均基因多样性指数F0代为0.183 4,F6代为0.176 5,F7代为0.175 4,F8代为0.1620,F9代为0.1560.Shannon多样性指数F0代为0.2684,F6代为0.2626,F7代为0.2614,F8代为0.241 5,F9代为0.231 9.各项遗传多态性指标一致表明,F0代群体遗传多态性水平最高,随选育世代数的累进,选育群体的遗传多态性水平呈现出下降的趋势.吉富品系罗非鱼选育群体间遗传相似性水平(Nei,1972)较高,为0.967 5～0.987 5,群体间遗传距离较小,大小范围为0.012 6～0.033 1.经过偏差校正,Nei(1978)计算得到选育群体间遗传相似性大小为0.972 6～0.992 6,群体间遗传距离为0.007 4～0.027 8.随选育世代数的累进,选育群体与基础群体间的Nei(1972,1978)遗传相似性呈减弱趋势,而Nei(1972,1978)遗传距离逐渐呈现出增大趋势.引物组合E-AAG/M-CTA产生一条大小为502 bp的特异性DNA条带,该条带在不同选育世代间随世代数的累进呈现出频率增高的趋势.     

封闭型水体中养殖密度对罗非鱼生长性能和水质的影响

为探究室内零换水条件下罗非鱼(Oreochromis mossambicus)养殖达到上市规格的最适宜密度水平,本试验设置4个密度梯度,养殖持续135 d,研究不同养殖密度对封闭型水体中罗非鱼的生长性能及养殖水体水质的影响。结果显示,随着养殖时间增加,低密度组的终末体质量(Final Body Weight,FBW)、增重率(Weight Gain Rate,WGR)、特定生长率(Specifit Growth Rate,SGR)逐渐与高密度组拉大差距,到135 d时,各组间差异显著(P＜0.05),说明养殖密度对罗非鱼的生长性能产生显著影响。最高密度组(20.6 尾/m²)的成活率(Survival Rate,SR)显著低于其他各组(P＜0.05),说明养殖密度过高导致成活率降低。饵料系数(Feed Conversion Rate,FCR)随着养殖密度的增加先降低后升高,各组间差异显著(P＜0.05),当养殖密度为14.7 尾/m²时饵料系数最低,为1.63,说明适当增加养殖密度可以降低饵料系数。最高密度组(20.6 尾/m²)在养殖后期成活率下降,这是导致该密度组饵料系数升高的主要原因。总产量(Total Gross Production,TGP)随养殖密度的升高而升高,但因养殖密度在20.6 尾/m²时的成活率最低,使得总产量在14.7和20.6 尾/m²时相当,均为283.38 kg。氨氮和磷酸盐随养殖密度和养殖时间的增加而升高,使得养殖后期最高密度组(20.6 尾/m²)受到的胁迫增加,这也是养殖密度为20.6 尾/m²时在养殖后期罗非鱼成活率降低的主要原因之一。综上所述,提高养殖密度能在一定程度上增加养殖产量,但高密度带来的水质恶化及胁迫会导致罗非鱼成活率下降,因此建议在零换水条件下,体质量为(11.95±0.50) g/尾的罗非鱼的养殖密度为14.7 尾/m²。     

尼罗罗非鱼IgT重链的蛋白表达及表达分析

IgT（Immunoglobulin T）作为新型免疫球蛋白在粘膜免疫中具有重要作用. 文中根据尼罗罗非鱼IgT基因序列构建原核表达载体获得IgT重组蛋白,相对分子量约75 kDa,并制备出效价较高的小鼠抗罗非鱼IgT的多克隆抗体. 荧光定量PCR检测证明：健康尼罗罗非鱼中IgT在多种组织中都有表达,其中脾脏、皮肤、肠和鳃中表达量相对较高. 无乳链球菌感染后,皮肤和头肾中IgT mRNA的相对表达量分别在12 h和4 d显著上调. 免疫组化结果显示：IgT蛋白在头肾和皮肤中均有少量分布,在无乳链球菌刺激后,在皮肤中出现大量分布. 以上结果表明:IgT在尼罗罗非鱼皮肤粘膜免疫中具有重要作用.     

Fermentation of Bifidobacterium lactis utilizing Tilapia viscera

罗非鱼加工过程中产生大量的下脚料,下脚料中的内脏一般不能被正确处理或高效利用.本研究采用液体发酵工艺,以细菌数为检测指标,以罗非鱼内脏为基本营养发酵乳双歧杆菌Bi07,通过单因素实验和正交实验(L9(34))对其发酵培养基配方和发酵条件进行了优化.优化后的最佳发酵培养基配方为:葡萄糖质量浓度为10 g/L,m料∶m水=1∶7.5,m( NaHCO3)∶m(C3 H7 NO2S·HCI) =4:5,番茄汁体积分数为100 mL/L;最优发酵条件为:发酵时间36 h,发酵温度30℃,接种体积分数5％,初始pH7.0.本研究表明,罗非鱼内脏可以用于乳双歧杆菌的培养基中.     

不同低温条件下吉富罗非鱼的耐受性研究

应用室内人工降温,以0.5 ℃/2 h的降温方法研究吉富罗非鱼的低温耐受能力,分析比较不同低温条件下吉富罗非鱼的昏迷情况和死亡情况,评价其低温耐受性.结果表明:在8、9、10和11 ℃持续低温胁迫下,吉富罗非鱼的昏迷温度在8.9～10.5℃,半数昏迷温度为9.6℃左右;从开始出现昏迷到全部死亡的经历时间分别为14.5、18.5、24.5和28.5 h;昏迷维持时间与累计死亡率呈显著的线性相关,分别为:y=-0.0489x2+1.4330x-9.5078(R2=0.9999)、y=-0.0136x2+0.5024x-3.6385(R2=0.9649)、y=0.0038x2-0.0461x-0.1344(R2=0.9843)和y=-0.0034x2+0.2443x-3.2131(R2=0.9945).吉富罗非鱼的耐受性与时间和温度密切相关,其中8℃组耐受时间最短,11℃组最长.