双层类脂膜修饰玻碳电极研究去甲肾上腺素电化学行为及其分析应用

报道了去甲肾上腺素在双层类脂膜修饰玻碳电极上的电化学行为。在 0 .8～ - 0 .3V(vs.Ag/AgCl)电位范围内 ,于 pH 6 .5、0 .0 1mol/LKH2 PO4 Na2 HPO4底液中 ,去甲肾上腺素产生很灵敏的氧化峰电流。该电流与去甲肾上腺素浓度在 3.5× 10 -6～ 3.1× 10 -4mol/L范围内呈良好线性关系。该电极可作为检测去甲肾上腺素的新型的高灵敏度电化学生物传感器。     

肉豆蔻酸-双层类脂膜修饰玻碳电极研究氯化血红素的电化学行为

报道了氯化血红素在肉豆蔻酸-双层类脂膜修饰玻碳电极上的电化学行为。在0.1~-0.7 V(vs.Ag/AgCl)电位范围内,扫描速率为40 mV/s时,氯化血红素在-0.4 V处产生很灵敏的还原峰电流。于pH7.50.01 mol/L KH2PO4-Na2HPO4底液中,该氧化峰电流与氯化血红素浓度在7.32×10-9~1.57×10-6mol/L范围内呈良好线性关系。该电极可作为检测氯化血红素的新型的高灵敏度电化学生物传感器。     

双层类脂膜核酸传感器的研究进展

对近几年发展起来的双层类脂膜（BLM）核酸传感器的研究工作进行了讨论，详细论述了该传感器的特性、工作原理以及在核酸杂交、序列分析研究中的应用，并与其它核酸传感器的研究作了对比；展望了其发展方向，引文31篇。     

基于纳米结构双层类脂膜的雌激素传感器

采用铂盘电极支撑的纳米金修饰的双层类脂膜(Pt/BLM/Au)来固定雌激素受体(ER),制备Pt/BLM/Au/ER用于检测雌激素的传感器.电极不同修饰状态分别用循环伏安法和交流阻抗法进行表征.以交流阻抗法测得电极结合雌激素后阻抗的改变与17β-雌二醇(E2)的浓度在5～150 ng/L范围呈良好线性关系,相关系数r=...     

双层类脂膜及其在电化学生物传感器中的应用

详细评述了各种双层类脂膜包括传统的双层类脂膜（ＢＬＭ）、固体载体支撑的自组双层类脂膜（ｓ－ＢＬＭ）、固体载体支撑的混合双层类脂膜（ｅ－ＢＬＭ）的制备方法和特性,比较了其优缺点。介绍了双层类脂膜在电化学生物传感器中的应用,并展望了发展前景。     

双层类脂膜电化学免疫传感器的研究及应用进展

详细评述了双层类脂膜(BLM)免疫传感器在电分析化学中的研究及应用进展，并展望了其发展前景。     

Nafion修饰电化学活化碳纤维微电极测定去甲肾上腺素

本用自制的碳纤维微电极，经过适当的电化学预处理以后，测定神经递质去甲肾上腺素时，表现出较高的灵敏度，用Ｎａｆｉｏｎ修饰后，能有效地消除脑中去甲肾上腺素的主要干扰物抗坏血酸的干扰，线性范围５×１０＾－５－２×１０＾－４ｍｏｌ／Ｌ，检出下为２×１０＾－８ｍｏｌ／Ｌ，用这种微电极对注射液中的去甲肾上腺素进行测定，回收率在９７．２％－１０２．８５之间，可用于活体分析。     

双层类脂膜的修饰及其在分析化学中的应用

双层类脂膜（ＢＬＭｓ）是公认的与众多生命过程直接相关的生物膜模拟体系。作者评述了大环化合物超分子试剂、药物和抗原抗体对ＢＬＭｓ的镶嵌修饰以及被修饰的ＢＬＭｓ体系和分析化学中的应用研究进展,其中包括基于ＢＬＭｓ的生物传感器和模拟酶;展望了发展趋势。引用文献６６篇。     

双层类脂膜非标记乙型肝炎表面抗原免疫传感器

采用固体铂盘电极支撑的双层类脂膜（Pt-BLM）技术崮定乙肝表面抗体（HBsAb）,研制成Pt-B12M-HBsAb电位型非标记免疫传感器,用于检测人血清中乙肝表抗原（HBsAg）。对影响构筑BLM的各种凶素进行了研究,用循环伏安法对Pt-BLM进行了表征。传感器对HBsAg呈Nernstu向应,其线性范围为2～320μg／L,线性回归方程为△V=-1．09＋32．41gρ（HBsAg）,线性相关系数r=0．9998。该传感器响应迅速,灵敏度高,稳定性及选择性好,于4℃干态保存4周,其响应信号基本不变。将其用于临床血清检验,结果满意。     

葡萄球菌肠毒素B基因的膜片电极支撑双层类脂膜核酸传感器的研究

本研究用膜片电极支撑双层类脂膜(BLMs)核酸传感器,检测葡萄球菌肠毒素B(SEB)基因。BLMs在膜片钳尖端形成后,传感器的检测电流大小和施加的电压成正比。通过在BLMs上固定针对SEB基因特异的直链十二烷烃链(0～273.65μg/L)修饰的单链寡核苷酸(C12-ssDNA)探针与膜片钳系统一同构建成膜片电极支撑BLMs核酸传感器。电流大小与探针的浓度呈正相关,线性回归方程I=5.49 2.94C;相关系数r=0.9962。SEB基因浓度在20～5000μg/L范围时,检测的电流信号与SEB基因浓度的自然对数呈负相关,线性回归方程I=1103.26-103.62lnC,相关系数r=0.9977;同时,核酸传感器有很好的特异性,与不产SEB的金葡菌属、其它食物中毒菌的基因组DNA和空白对照组反应无明显电信号响应。应用原子力显微镜对BLMs表面微观结构、ssDNA固定于BLMs上和BLMs上杂交洗脱后的表面微观结构进行观察。本研究构建的膜片电极支撑BLMs核酸传感器为SEB基因的检测提供了一种快速、灵敏、特异性强的方法。     

s-BLM修饰电极对组胺电化学传感行为的研究

The electrochemical biosensor properties of the molecular devices based on solid supported bilayer lipid membranes were investigated. The results showed that the system embedded with antihistaminic agent had strong response for the histamine. The response currents for the histamine will rise following the increasing concentrations of the histamine,as a result of the special opposing effect between histamine and antihistamine. Near the normal physiological condition（pH=7. 5）,a good linearity occurred for the current response against histamine concentration ranging from 3. 0 to 60. 0 μg / L,and the relation coefficient R is 0. 9878. All the experiments mentioned above showed good sensitivity,selectivity and stability. This system can measure the concentration of histamine under -200 mV by voltammetry and be expected to form the electrochemical biosensor with high stability and low detection limit.     

不锈钢支撑双层类脂膜离子传感器的电化学研究与应用

C60;分子器件;不锈钢支撑双层类脂膜离子传感器的电化学研究与应用     

双层磷脂膜的电化学性质及其在生物传感器中的应用

由于双层磷脂膜（BLM）可模仿自然界的生物细胞膜的生物相容性，成为物分子的天然固定化材料，因此生物传感器的研制领域显示出广泛的应用前景，本文介绍了BLM、s-BLM的电化学性质，制备技术，并评述了其在生物传感器的应用研究进展。     

双层类脂膜成膜过程的电化学方法研究

应用循环伏安法(CV),计时电流法(I＿T)和开路电压法(V＿T)研究了导电玻璃支撑的双层类脂膜(ITO/s＿BLM)的成膜动力学过程.实验表明,导电玻璃(ITO)是一种理想的成膜支撑基底,ITO/S＿BLM膜具有成膜快稳定时间长的特点.与循环伏安法相比,计时电路法和开路电路法能更为详细地给出膜系统组装的瞬时信息.ITO/s＿BLM体系的膜电压实验值约为0.1V.     

Transport of Cesium Ion Across a Bilayer Lipid Membrane and Its Facilitation in the Presence of Iodide Ion

The ion transport current was clearly observed across a bilayer lipid membrane (BLM) between two aqueous phases (W1, W2) containing 0.1 M CsCl. This indicates that Cs⁺ can spontaneously penetrate the BLM in the absence of any kind of transporter. In addition, the current density at a given potential between W1 and W2 increased using I^? instead of Cl^? as the counter ion. Our results strongly suggest that the cell membrane transport is partially responsible for the internal exposure of ¹³⁴Cs and ¹³⁷Cs.