稀土离子和钙调蛋白对乳酸脱氢酶活性的影响

分别研究了三价稀土离子、稀土离子和钙调蛋白(CaM)的复合物以及作为稀土离子配体的二乙三胺五乙酸(DTPA)及其衍生物二乙三胺五乙酸-双二甲酰胺(DTPA-BDMA)和二乙三胺五乙酸-双(异烟肼)(DTPA-BIN)对乳酸脱氢酶(LDH)活性的影响.结果表明稀土离子浓度小于3μmol@L-1时对酶活性具有轻微的激活作用,离子浓度增大到6μmo1@L-1后则开始表现出抑制作用;钙调蛋白可以缓解这种抑制作用;二乙三胺五乙酸及其衍生物在浓度超过5μmol@L-1时对酶活性均有抑制,这种抑制作用在加入外源的钙调蛋白后也得到缓解.     

酶荧光毛细管分析法测定微量血清中乳酸脱氢酶活性

基于丙酮酸/还原型辅酶I/乳酸脱氢酶(LDH)/乳酸/氧化型辅酶I荧光猝灭体系和荧光毛细管分析技术,建立了可用于微量样品中LDH酶活性测定的方法。优化的测定条件为:激发及发射波长分别为350和460nm;测定温度为25℃;酸度为pH 6.5;NADH浓度为300μmol/L;丙酮酸浓度为1.2mmol/L。本方法的测定范围为50～1500IU/L,检出限为30IU/L,相对标准偏差2.1%～2.2%(n=10),回收率在96.4%～105%范围内。本方法操作简单,每次测定仅需样品2.0μL、试剂18.0μL,分析速度约为30样/h,利用本方法测定了微量血清中LDH的活性。     

固定化乳酸脱氢酶活性的X射线微区分析

利用X射线微区分析，对吸附法得到的固定化乳酸脱氢酶的活性进行了分析；以乳酸为底物，铁氰化钾及铜离子作为捕捉剂，底物经乳酸脱氢酶及氧化型辅酶NAD^ 的作用下催化产生丙酮酸，反应生成的还原性辅酶NADH使铁氰化物还原为亚铁氰化物，后者和铜离子反应产生具有高电子密度的亚铁氰化铜沉淀，可以确定固定化乳酸脱氢酶的催化活性部位；结果表明，以合成出的大孔吸附树脂为固定化酶载体，其酶活性较高，活性乳酸脱氢酶分布较均匀，得到了固定化乳酸脱氢酶的活性定位的最佳条件，并对不同结构载体固定化酶活性进行了研究。     

亲和层析分离纯化乳酸脱氢酶

以壳聚糖为载体,戊二醛为交联剂,氨基三乙酸为配基,制备固载铜离子的金属螯合亲和吸附剂,层析分离纯化乳酸脱氢酶(LDH),收得率为23.3％,纯化倍数达3.1.实验结果表明该亲和层析固定相对LDH有较高的分离纯化选择性.     

示差脉冲伏安法测定乳酸脱氢酶活性及纳米微粒生物毒性检测新方法研究

采用示差脉冲伏安法，在乳酸脱氢酶(LDH)酶促体系“丙酮酸盐 + NADH +H⁺ (?) 乳酸盐 + NAD⁺”中，通过检测NAD⁺还原峰电流的变化，测定了不同条件下(不同酶用量、缓冲液pH值以及温度)LDH的活性、酶促体系的米氏常数K_m^NADH以及最大反应速率v_max。并且在最佳实验条件下，通过检测LDH活性的改变，实验考察了3种纳米物质(ZnS，TiO₂(R)和TiO₂(A))对乳酸脱氢酶酶促体系的影响。     

L-乳酸脱氢酶催化反应机理的理论研究进展

介绍Ｌ－乳酸脱氢酶可逆催化氧化Ｌ－乳酸生成丙酮酸的反应机理研究的最新进展。讨论底物及活性中心附近残基的构型对反应的影响以及Ｈ－离子转移的可能机理。     

乳酸脱氢酶反应器用于流动注射分析测定人体液中的L-乳酸

本文用[3-(2-氨乙基)氨丙基]三乙氧基硅烷试剂胺化一定孔径大小的载体,用戊二醛作偶联剂,将乳酸脱氢酶固定于其上,装入柱内,联结于流动体系中。L-乳酸的浓度在0.1～4.4mmol/L呈线性,检测限为0.4nmol(s/N=4),相对标准偏差≤1.2％,回收率在96％～103％。每小时进样35次。测定了固定化LDH的表观米氏常数及人血清和尿中的L-乳酸。     

电聚合修饰碳纤维电极及乳酸脱氢酶活性的测定

用电聚合方法将亚甲基绿 (MG)修饰在碳纤维电极 (直径 7μm)上 ,并用该修饰电极测定了乳酸脱氢酶 (LDH)活性。在烟酰胺腺嘌呤二核苷酸 (NAD+ )浓度为 6 .0× 10 - 4mol L ,乳酸浓度为 5 .0× 10 - 3mol/L的pH7.0NaOH KH2 PO4 缓冲介质中 ,电位恒定在 +0 .10V下 ,用电流法测定乳酸脱氢酶活性 ,线性范围为 15～ 2 4 0U/mL ,检测限为 10U/mL ,响应时间为 15s。该修饰微电极稳定性好、灵敏度高、测定干扰小     

计时电流法研究4-(N-亚硝基甲氨基)-1-(3-吡啶基)-1-丁酮对谷氨酸脱氢酶活性的影响

用计时电流法研究了烟草特有亚硝胺之一4 (N 亚硝基甲氨基) 1 (3 吡啶基) 1 丁酮(NNK)对谷氨酸脱氢酶(GLDH)催化活性的影响,测定了NNK存在与否时GLDH酶促反应的最大反应速率及米氏常数或表观米氏常数。实验结果表明,NNK对GLDH的催化活性有明显抑制作用,而且属于可逆竞争性抑制,测得在25℃,pH 8.0时抑制常数Ki为176μmol·L-1。     

Effect of the Buffer Concentration on the Separation of Lactate Dehydrogenase Isoenzymes from Different Sources by Electrophoresis

Abstract

The separation of lactate dehydrogenase isoenzymes by zone electrophoresis using cellulose acetate strips as support was dependent on the concentration of the buffer used (5 mM and 50 mM, pH 7.4) and on the source of the material (chicken liver or guinea-pig liver).

In three different 5 mM buffer systems, pH 7.4 (phosphate, veronal and Tris-HC1) the four lactate dehydrogenase isoenzymes present in chicken liver cytosol: M₃H, M₂H₂, MH₃ and H₄ were resolved into four separated bands. M₃H and M₂H₂ isoenzymes migrated towards the cathode whereas the other two isoenzymes showed anodic mobilities. In 50 mM buffers, pH 7.4 all enzyme activity appeared as a single band with anodic mobility similar to that of H₄. Guinea-pig liver isoenzymes were well resolved in both buffer conditions and appeared as five bands with anodic mobilities.

The different behaviour of the lactate dehydrogenase isoenzymes in 5 mM and 50 mM buffers can not be assigned to ionic strength effects but it may explained by assuming the binding of buffer anions to the different isoenzymes. The binding would increase with the molar concentration of the buffer and reduce charge differences among the isoenzymes to different extents depending on the source of the enzyme, chicken or guinea-pig liver.     

Immobilization and Characterization of Lactate Dehydrogenase on TEOS Derived Sol-Gel Films

Physical adsorption and physical entrapment techniques have been utilized for the immobilization of lactate dehydrogenase (LDH) on tetraethylorthosilicate (TEOS) derived sol-gel films. The enzyme (LDH) activity has been assayed as a function of time, temperature, pH and pyruvate concentration. The results of photometric measurements used for monitoring the reaction yield a response time of about 1 min, linearity over a concentration range of 0–1.5 × 10^-3 M and detection limit of 5 × 10^-5 M. The TEOS sol-gel films containing LDH have been found to be stable for about 30 days at temperatures 4 to 10°C.     

介体型乳酸脱氢酶生物传感器的研制及应用

本报道了能对丙酮酸产生良好响应的电流型乳酸脱氢酶生物传感器。该传感器以耐尔兰Ａ修饰浸石墨电极为基体电极，将酶直接固化在蚕丝蛋白膜上。在ＰＨ７．４的ＮａＨ２ＰＯ４－ＮａＯＨ介质中，当２．４×１０＾－４ｍｏｌ／Ｌ的辅酶Ｉ（ＮＡＤＨ）存在下，该传感器的响应电流与丙酮酸浓度在３．２×１０＾－５ｍｏｌ／Ｌ范围内有良好的线性关系。响应时间为６０ｓ．本讨论了影响传感器响应的各种因素，用此传感器测定了人血清中     

基于可见吸收信号的乳酸脱氢酶光纤传感器

报道一种测定乳酸脱氢酶活力的基于可见吸收信号的光纤生物传感器，在该传感体系中，通过辅酶Ｉ的氧化还原对（ＮＡＤ＾＋／ＮＡＤＨ）将乳酸脱氢酶和心肌黄酶催化的两个脱氢过阳以耦合，第一个脱氢过程对分析对象进行了化学识别，第二个脱氢过程引起可见吸收信号的变化，该传感器对０～４００Ｕ／Ｌ的乳酸脱氢酶有线性响应关系，检测下限为４８ＵＬ，该传感器已用于人体血清中乳酸脱氢酶活力的测定。     

Hydrogen Evolution from L-Lactate and L-Malate with the Combination of Lactate Dehydrogenase or Malate Dehydrogenase and Hydrogenase from A. Eutrophus H16

Hydrogen evolution system from L-lactate and L-malate consisting of lactate dehydrogenase or malate dehydrogenase and hydrogenase from cell free extracts of Alcaligenes eutrophus H16 was established. When the solution containing L-lactate, lactate dehydrogenase, NAD and hydrogenase was incubated at 30°C hydrogen evolution was observed. Similarly, the hydrogen evolution was also observed from the L-malate incubated at 30°C.     

微流控芯片上同工酶的孵育及活性检测

建立了一种在微流控芯片上进行同工酶孵育及活性检测的方法. 该方法在集成温控装置的微流控芯片上实现对同工酶与辅酶反应进程的控制, 完成同工酶的进样、孵育反应、电泳分离和活性检测的实验步骤. 建立了基于微流控芯片的同工酶荧光检测系统, 使用360 nm光源激发辅酶产生荧光, 在460 nm处选择性采集荧光信号. 在微流控芯片上实现了同工酶样品的快速活性检测, 酶活性检测限达到0.5 U/L.