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1.
建立了液相色谱串联质谱(HPLC-MS/MS)同时对蜂蜜中链霉素和双氢链霉素残留量进行分析的方法。采用磷酸溶液提取,苯磺酸固相萃取柱和C18固相萃取柱串联净化,液相色谱串联质谱测定。链霉素的检出限为0.002 mg/kg,线性范围为0.005~0.100 mg/kg,相关系数为0.9992;双氢链霉素检出限为0.001mg/kg,线性范围为0.002~0.050 mg/kg,相关系数为0.9924。方法回收率为78%~95%,相对标准偏差为2.6%~4.9%。该法实用、准确、快捷,可应用于蜂蜜样品中链霉素和双氢链霉素的同时检测。  相似文献   
2.
牛奶样品经磷酸溶液提取,提取液用苯磺酸阳离子交换柱和C18固相萃取柱净化,链霉素残留液用甲醇从C18固相萃取柱上洗脱,经旋转蒸发器减压蒸干,残渣用0.01mol/L庚烷磺酸钠溶液溶解,用柱后衍生-高效液相色谱荧光检测器在激发波长263nm和发射波长435nm测定.方法线性范围为0.01~0.10mg/kg;在0.01~0.10mg/kg范围,三个添加水平的回收率为78.3%~80.2%,变异系数(CV)为7.4%~12.4%,方法检出限为0.005mg/kg.  相似文献   
3.
高效液相色谱法测定蜂产品中链霉素残留量   总被引:11,自引:0,他引:11  
采用双试剂柱后衍生法,在C18柱上以0.01mol L1 庚烷磺酸钠 乙腈(65 35)为流动相,以荧光检测器(λex=263nm,λem=447nm)检测蜂蜜中链霉素的残留量,优化了蜂蜜样品的前处理方法和高效液相色谱条件,包括流动相组成和流速、衍生化试剂的处理、样品前处理过程中淋洗液和提取液的用量等,并选用三氯乙酸溶液(1 1)作为沉淀剂,建立了一种较好的链霉素检测方法。  相似文献   
4.
建立了奶粉样品中链霉素与双氢链霉素残留量的超高效液相色谱-串联质谱测定方法。样品用ED-TA-Na2缓冲溶液提取,弱阳离子交换树脂固相萃取柱(WCX)净化后,采用HILIC色谱柱(50 mm×2.1 mm,1.7μm)分离,以乙腈和含0.3%甲酸的100 mmol/L甲酸铵溶液梯度洗脱,多反应监测模式测定,外标法定量。在优化实验条件下,链霉素和双氢链霉素在2.0~50.0μg/L质量浓度范围内线性关系良好,检出限均为0.01 mg/kg,方法的回收率为74%~110%,相对标准偏差均不大于9.4%。该方法简便、快速、实用、准确,能够满足奶粉中链霉素和双氢链霉素残留量的检测要求。  相似文献   
5.
建立了植物性食品(苹果、芹菜、甜椒、干扁豆)中链霉素(Streptomycin,STR)和双氢链霉素(Dihydrostreptomycin,DHS)的高效液相色谱-串联质谱(HPLC-MS/MS)检测方法。样品经磷酸盐缓冲溶液提取,借助WCX固相萃取柱富集净化后,采用Atlantis Hilic Silica亲水作用色谱柱(100 mm×3.0 mm,3μm)分离,乙腈-0.1 mol/L甲酸铵和0.1%甲酸溶液等度洗脱,以电喷雾电离串联质谱多反应监测(MRM)正离子模式进行检测,外标法定量。结果显示,链霉素和双氢链霉素在10~120μg/L质量浓度范围内线性良好,相关系数(r)均大于0.999,定量下限均为125μg/kg。本底空白的4种样品基质在3个添加水平(125、250、500μg/kg)下的平均回收率为83.6%~101%,相对标准偏差为2.3%~7.8%。该方法无需使用对LC-MS联用仪造成污染的离子对试剂,且方法操作简便、快速、可靠、稳定,能满足大部分植物性食品中链霉素和双氢链霉素的检测需要。  相似文献   
6.
柱后衍生高效液相色谱法测定猪肉中的链霉素残留   总被引:5,自引:0,他引:5  
猪肉样品经酸性氧化铝基质固相分散提取和C18固相萃取柱净化,链霉素残留液用甲醇从C18柱上洗脱,在氮吹仪上吹干,残渣用0.01 mol/L庚烷磺酸钠溶液溶解,用柱后衍生高效液相色谱法荧光检测,激发波长和发射波长分别为263、435 nm。该方法线性范围为10~200μg/kg,三个添加水平的回收率为77.4%~86.5%,测量结果的相对标准偏差为2.00%~3.53%(n=5),检出限为5μg/kg。  相似文献   
7.
研究系统地优化了样品前处理过程及仪器分析中影响链霉素和双氢链霉素残留分析准确度与响应灵敏度的各主要因素,建立了葡萄中链霉素和双氢链霉素残留的快速精准定量分析方法。葡萄样品经磷酸溶液(pH=2)超声提取、Oasis HLB单固相萃取柱富集净化后,采用Waters HSS T3色谱柱(100 mm×2.1 mm, 1.8 μm)分离,柱温35 ℃,进样量2 μL,以0.1%甲酸水溶液-甲醇溶液(60∶40, v/v)为流动相进行等度洗脱,在正离子、电喷雾电离源多反应监测模式下测定,外标法定量。链霉素和双氢链霉素在2~400 μg/L质量浓度范围内线性关系良好,相关系数(R2)分别为0.9991和0.9997;在5、10、20和40 μg/kg 4个添加水平下的平均回收率为76.8%~91.9%,相对标准偏差为0.4%~10.2%;链霉素和双氢链霉素的检出限(LOD)为1 μg/L,定量限(LOQ)为5 μg/kg。为验证该方法的适用性,将方法适用于无籽红提、新郁葡萄、夏黑葡萄等实际样品中进行添加回收实验,链霉素和双氢链霉素的平均回收率分别为77.2%~83.9%和70.8%~78.9%, RSD为3.0%~15.6%。该法的准确度和精密度均符合葡萄中链霉素和双氢链霉素分析要求,且操作简便、准确,灵敏度高,适用于葡萄中链霉素和双氢链霉素残留量的检测分析。  相似文献   
8.
在pH 3.06的BR缓冲介质中,链霉素(SM)与滂胺天蓝(PSB)反应生成离子缔合物,出现了吸收峰在622 m波长处的负吸收光谱,与PSB的正吸收峰(612 nm)相比,红移了10 nm,在622 nm波长处吸光度负值(-A)的增加与SM浓度之间在0.17×10-7~1.8×10-5mol·L-1范围内呈线性关系,其表观摩尔吸光率(ε622)为1.06×104L·mol-1·cm-1.应用此方法分析了3瓶链霉素硫酸盐注射液样品,测得其SM含量与标示值相符.在注射液样品的基础上加入SM标准溶液作回收试验,测得回收率在99.1%~101.3%之间.  相似文献   
9.
1,2-萘醌-4-磺酸钠分光光度法测定链霉素的研究   总被引:1,自引:0,他引:1  
链霉素(streptomycin,STR)是一种对结核分枝杆菌有强大抗菌作用的氨基糖苷类抗生素,它通过作用于细胞的核糖体抑制细菌蛋白质的生物合成而呈现杀菌作用[1].目前所报道检测链霉素含量的方法主要有高效液相色谱法[2] 、鲁米诺的流动注射化学发光法[3] 、微生物学检测法[4、5] 、荧光法[6]、免疫法[7]以及紫外分光度度法[8]等,但以可见光度法测定链霉素的研究还很少有报道.本文基于1,2-萘醌-4-磺酸钠(NQS)能与含有胺基类药物分子结构中的胺基发生亲核缩合或取代作用 [9-13],建立了以NQS作为显色剂在可见光度法测定STR的新方法.研究表明,控制溶液pH12.00,STR与NQS发生缩合反应生成摩尔比为1: 2红褐色产物,最大吸收波长λ max =470 nm,STR浓度在2.91μg/mL~145.7μg/mL范围内与吸光度成良好线性关系.与文献中所报道的其他方法相比,该方法不仅具有简便、快速、不需昂贵的仪器设备等特点,具有重要的应用价值.  相似文献   
10.
以γ-射线预辐照,在聚丙烯(PP)纤维上接枝丙烯酰胺(AAm),再经过Hofmarm降解反应制备弱碱性离子交换纤维(PP-g-YAm)交换容量达到5.47mmol/g干纤维.研究了PP-g-VAm纤维对链霉素的吸附和解吸性能.其吸附等温曲线符合Langmiur吸附等温式.静态吸附试验表明,PP-g-AAm纤维对链霉素的吸附量可以达到446.96mg/g千纤维,脱附率达到98.9%.  相似文献   
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